news 2026/6/10 20:47:32

Pharos STEM 台式场发射电镜在外泌体形貌与粒径分析中的应用

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张小明

前端开发工程师

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Pharos STEM 台式场发射电镜在外泌体形貌与粒径分析中的应用

外泌体(Exosomes)是一类由细胞主动分泌的纳米级细胞外囊泡,近年来在生命科学与医学研究中受到广泛关注。作为细胞间信息传递的重要载体,外泌体在疾病诊断、作用机制研究以及药物递送等方向均显示出重要研究价值。

在外泌体研究中,高分辨成像与准确粒径分析是基础且关键的环节。本文将结合Pharos STEM 台式场发射生物电镜,介绍外泌体的基础概念、研究挑战以及在电镜条件下的形貌与粒径表征特点。


PART 01|什么是外泌体(Exosomes)?

细胞外囊泡(Extracellular Vesicles,EVs)是细胞在正常生理或病理状态下主动释放的一类膜性结构,几乎存在于所有生物体中。根据来源与尺寸差异,EVs 通常可分为三类:

  • 外泌体(Exosomes,EXOs)

  • 微囊泡(Microvesicles,MVs)

  • 凋亡小体(Apoptotic bodies,ABs)

其中,外泌体是尺寸最小的一类,直径通常为 30–150 nm(平均约 100 nm),主要来源于细胞内吞系统。

外泌体广泛存在于多种生理体液中,如血液、尿液、唾液、精液、母乳、脑脊液、胆汁等,为液体活检和非侵入式检测提供了重要研究对象。

图 1:细胞外囊泡(EVs)的三种主要亚群示意图


PART 02|外泌体的生物形成过程

外泌体的形成过程具有高度的生物学调控特性:

  1. 细胞膜内陷形成早期核内体(ESEs)

  2. ESEs 逐渐成熟为晚期核内体(LSEs)

  3. 核内体膜向内出芽,形成多个腔内囊泡(ILVs)

  4. 含有 ILVs 的结构被称为多囊泡体(MVBs)

在 ESCRT 复合物等分子机制的调控下,特定蛋白质、核酸和脂质被选择性装载进入囊泡中。
当 MVBs 与质膜融合时,内部囊泡被释放到细胞外,即形成外泌体;若与溶酶体融合,则被降解。

相比之下,**微囊泡(MVs)**则是通过细胞膜直接向外出芽产生,其形成机制与外泌体存在本质差异。

图 2:细胞外囊泡(EVs)的生物合成过程示意


PART 03|外泌体研究的意义与现实挑战

1️⃣ 研究与应用价值

外泌体因其天然来源和生物相容性,在多个方向展现出研究潜力:

  • 细胞间通讯研究:携带蛋白质、脂质、miRNA、mRNA 等信息分子

  • 疾病机制探索:与肿瘤、神经退行性疾病、心血管疾病等密切相关

  • 药物递送载体:可作为 RNA、化疗药物和免疫调节分子的递送平台

  • 液体活检:为疾病早期诊断和疗效监测提供新思路

2️⃣ 关键技术挑战

尽管研究前景广阔,外泌体在实际应用中仍面临多方面挑战:

  • 分离纯化难度大:得率、纯度与操作复杂度难以平衡

  • 样本异质性明显:来源、培养条件和方法差异导致结果可比性不足

  • 体内行为机制尚不清晰:分布、清除和递送效率仍需深入研究

  • 安全性评估不足:长期生物学效应和潜在免疫风险仍待验证

在这一背景下,高分辨结构表征手段成为外泌体研究中不可或缺的重要工具。


PART 04|Pharos STEM 下的外泌体形貌与粒径分析

透射电子显微镜(TEM / STEM)在外泌体研究中被广泛视为形貌与粒径表征的核心技术手段之一。

为什么 STEM 对外泌体研究重要?

  • 可直接观察单个外泌体的真实形貌

  • 精确测量粒径并统计粒径分布

  • 辅助区分外泌体与微囊泡、脂蛋白等杂质

  • 验证分离纯化工艺的有效性

Pharos STEM 台式场发射生物电镜的成像特征

Pharos STEM 台式场发射电镜条件下,外泌体通常呈现以下特征:

  • 形貌多为杯状或轻微凹陷的圆盘状(与 TEM 制样干燥过程相关)

  • 部分外泌体呈近似球形结构

  • 粒径集中分布在30–150 nm范围内

  • 群体粒径分布相对集中,有助于判断样本纯度

文中所示图像均来自客户样本的实际检测结果,拍摄设备为Pharos STEM 台式场发射生物电镜,可用于外泌体基础研究与方法学验证。


参考文献(References)

  1. Aryani, A., & Denecke, B. (2016).Exosomes as a nanodelivery system. Molecular Neurobiology, 53(2), 818–834.

  2. Raposo, G., & Stoorvogel, W. (2013).Extracellular vesicles. Journal of Cell Biology, 200(4), 373–383.

  3. Contreras-Naranjo, J. C., et al. (2017).Microfluidics for exosome isolation. Lab on a Chip, 17(21), 3558–3577.

  4. Kalluri, R., & LeBleu, V. S. (2020).The biology and applications of exosomes. Science, 367(6478).

  5. Rezaie, J., et al. (2022).Exosomes in clinical trials. Cell Communication and Signaling, 20(1), 145.

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